摘要微小核糖核酸( miRNAs)是一種內(nèi)源性非編碼調(diào)控單鏈小分子核糖核酸,可通過與目標信使核糖核酸 ( mRNA)結(jié)合,調(diào)控基因的轉(zhuǎn)錄后翻譯過程。有研究顯示miRNAs參與修復受損心肌。此外,越來越多的研究發(fā)現(xiàn)不同的miRNAs可參與干細胞功能調(diào)控,調(diào)節(jié)干細胞存活、遷移、分化等過程,進而通過改善移植干細胞命運,提高心肌梗死后心功能。本文旨在對miRNAs與干細胞移植治療心肌梗死的研究現(xiàn)狀及所面臨的問題進行綜述。
關(guān)鍵詞心肌梗死;微小核糖核酸;干細胞移植;再生治療
冠狀動脈疾病在我國乃至全球發(fā)病率及死亡率都高居首位,其中心肌梗死是臨床常見急危重癥,目前的治療方法雖 然能顯著改善心肌梗死患者的臨床預后,但是因壞死的心肌 細胞難以再生,存活的心肌經(jīng)歷了缺氧及心臟重構(gòu),致使心臟功能嚴重受損。目前干細胞移植治療心肌梗死,被認為是 再生壞死心肌細胞,修復梗死心肌具前景的治療方法,各種類型干細胞已用于實驗及臨床研究,然而不管何種類型干細胞均存在自身優(yōu)勢與局限性。骨髓間充質(zhì)干細胞移植治療心肌梗死可顯著改善其心功能,然而也有研究顯示了骨髓間充質(zhì)干細胞分化為心肌細胞的不確定性,近期的幾個大型 臨床實驗中對骨髓間充質(zhì)干細胞移植治療心肌梗死的確切療效亦無突破性進展。 胚胎干細胞及多能誘導干細胞是到 目前為止是具潛力替代壞死心肌的種子細胞源,但首先得解決其臨床應(yīng)用的安全性及倫理問題。心臟干細胞不僅可定向分化為心肌細胞、血管平滑肌細胞及內(nèi)皮細胞,并具有組織特異性與低免疫原性等特點。心肌損傷后,大部分心臟干 細胞即進入細胞周期、復制并定向分化為心肌細胞譜系,顯 著改善心肌梗死后心功能。且心臟干細胞在I/II期臨床試驗中均獲得可喜的成果。然而van Berlo等近期的一項
研究發(fā)現(xiàn),成年及慢性疾病的小鼠心臟受損后,心臟固有干 細胞確實能產(chǎn)生出新的心肌細胞,但所占百分率僅為3%或 更低??赡茉诟纳菩墓δ芊矫娌⒉痪哂酗@著性。由于心肌梗死后,心臟微環(huán)境變化極易導致移植干細胞發(fā)生凋亡,干細胞生物學利用率受限,減弱了其對心肌梗死的治療療效。因此,提高干細胞移植后的存活率及功能發(fā)揮將為轉(zhuǎn)化醫(yī)學發(fā)展與心臟疾病的防治開拓新的方向與策略。
1微小核糖核酸( miRNAs)的生物學特性 miRNAs作為新一代調(diào)控細胞命運的決定因素, 由Lee.等在秀麗線蟲體內(nèi)發(fā)現(xiàn),隨著對其結(jié)構(gòu)及生理活性的研究發(fā)現(xiàn):miRNAs是由長鏈初級核糖核酸( pri-miRNA)在細胞核內(nèi)被核糖核酸酶Drosha剪切成具有莖環(huán)結(jié)構(gòu)的miRNA前體(pre-miRNA)。隨后pre-miRNA在轉(zhuǎn)運因子Exponin-5的作用下進入細胞質(zhì),在細胞質(zhì)內(nèi)被剪切成 20~24 nt的雙鏈miRNAs,雙鏈miRNA。在特異性解旋酶作 用下形成單鏈,從而成為成熟的miRNAs并在細胞質(zhì)內(nèi)表達其生理活性。miRNAs的作用機制是通過結(jié)合到目標mRNA的非編碼區(qū)( 3IUTR),抑制靶標mRNA的翻譯從而起到重要的負性調(diào)控作用。
目前為止,在人類組織細胞中發(fā)現(xiàn)大 約有2 000個miRNAs參與調(diào)控人類總基因的30%—500-/0的表達。研究還發(fā)現(xiàn),在不同組織不同細胞miRNAs的表達譜及序列特征均有所不同,甚至細胞不同發(fā)育分化階段均會出現(xiàn)miRNAs的差異表達,起到調(diào)控細胞“定時、定向”分化的作用。且每個miRNAs可同時有多個靶基因位點,而每個靶基因位點可能同時受多個miRNAs調(diào)控,可見miRNA。種類繁多,其靶基因位點及功能作用復雜多樣。
2 miRNAs與干細胞功能相關(guān)性 雖然目前各種成體多能干細胞,胚胎干細胞,及誘導重組 干細胞已成功用于治療缺血性心肌病并改善心梗后心功能一21。 然而干細胞移植治療心肌梗死仍處于初級階段,在臨床試驗 及動物模型實驗的長期觀察中發(fā)現(xiàn):(1)各種類型干細胞均存 在移植存活率低的問題,尤其是從衰老機體或疾病狀態(tài)下獲 取的干細胞,其存活及功能障礙更為明顯;(2)心肌梗死后移植干細胞募集到梗死區(qū)及與原位細胞長期整合作用在目前的大多數(shù)研究均未見成效;(3)移植干細胞分化而來的功能 心肌細胞十分有限,是否能夠在體內(nèi)長期維持,疾病及衰老 狀態(tài)是否影響其心源性分化潛能目前均尚未得知。
因此,現(xiàn) 已采取多種措施改善移植干細胞命運及功能,提高其修復梗死心肌的有效性。由于miRNAs參與調(diào)控基因表達網(wǎng)絡(luò)并具有容易被小分子干擾等特性,因此可用于干細的胞移植前處 理。近年來,隨著對miRNAs與干細胞的研究發(fā)現(xiàn),在多種 干細胞中均存在各自特異的miRNAs表達,對干細胞的生物學活動具有重要的調(diào)控作用。以往研究顯示幾種miRNA。家族成員可維持胚胎干細胞的多能性,并且將不同的miRNA。 聯(lián)合過表達就足以誘導多能干細胞的產(chǎn)生;而一些miRNAs可部分抑制維持干細胞未分化狀態(tài)基因的表達,并激活干細 胞譜系特異性基因,發(fā)揮促進干細胞分化作用,此 外,干細胞所釋放的外泌體含有促進受損心肌組織修復的miRNAs。因此,干細胞的功能與miRNAs調(diào)控存在相 關(guān)性。事實上,在心血管疾病的發(fā)生發(fā)展過程中,不同的 miRNAs產(chǎn)生差異性表達,逆轉(zhuǎn)差異表達的miRNA。可能使冠脈疾病患者的細胞功能發(fā)生改變
2.1 miRNAs促進移植干細胞存活 心肌損傷后釋放一系列炎癥因子及細胞因子,致使心臟微環(huán)境發(fā)生變化,極大影響了干細胞的存活,限制了移植細胞的功能發(fā)揮。近來的多項研究表明多種miRNA。家族成員 可促進心肌梗死后移植細胞存活。Huang等報道在小鼠心 肌梗死模型中,將過表達miRNA-126的骨髓間充質(zhì)干細胞 移植到心肌梗死區(qū)域,可促進新生血管形成,修復梗死心肌。 另有報道稱,過表達miRNA-21的骨髓間充質(zhì)干細胞,可通 過改善線粒體膜電位損傷從而促進缺血缺氧條件下骨髓間充 質(zhì)干細胞的存活。隨后Hu等的研究顯示,將分別攜帶miRNA-21、miRNA-24、miRNA-221的大鼠心臟干細胞在體外模擬的氧化應(yīng)激環(huán)境下凋亡減少,更有趣的是,同時過表達這三種miRNAs比單獨作用的抗凋亡能力強,其作用機制可能是與凋亡相關(guān)蛋白Bim結(jié)合,抑制其表達,從而發(fā)揮促細胞存活作用。此外,過表達miRNA-155可通過抑制受體相互作用蛋白1( RIPl),進而激活蘇氨酸激酶(AKT)信號通路, 促進氧化應(yīng)激環(huán)境中心臟干細胞存活。由此可見,miRNA。 可增強移植干細胞抵御心梗局部缺血缺氧微環(huán)境的能力,為干細胞發(fā)揮生物學效應(yīng)奠定基礎(chǔ)。
2.2 miRNAs與干細胞遷移
miRNAs不但能夠促進移植干細胞存活,一些miRNA。還參與調(diào)控移植干細胞的遷移作用?;|(zhì)衍生因子一1(SDF-1) 是CXC族趨化因子成員,可與其受體CXCR4相互作用,對干細胞遷移起關(guān)鍵作用。近年來研究顯示:miR\A-150與 miRNA-146其中一個靶mRNA即為CXCR4,兩者均可阻斷干細胞膜表面受體CXCR4翻譯過程,使SDF-l不能有效激活 CXCR4及其下游信號通路,削弱移植細胞遷移作用:因 此抑制這兩種miRNAs的表達可促進移植干細胞遷移至心梗區(qū)域,發(fā)揮修復梗死心肌作用。然而有報道稱m1RNA-150和 miNA-146可與多種凋亡相關(guān)蛋白結(jié)合,其高表達可對細胞存活作用產(chǎn)生積極的影響。MiRNAs對于生物體的調(diào)控作用是復雜多樣的,利用miRNAs治療疾病的過程中,需要權(quán)衡利弊:
2.3 miRNAs促進干細胞分化 心肌缺血后再生壞死心肌細胞,建立有效的血運系統(tǒng)對保護心臟功能、改善遠期預后起關(guān)鍵作用。若只有新生心肌, 則會由于持續(xù)缺血而不能改善心功能;若只有新生血管而 無新生心肌,則不能產(chǎn)生收縮壓力。干細胞向心肌分化的過程是由一系列轉(zhuǎn)錄因子構(gòu)成的信號網(wǎng)絡(luò)通路調(diào)控,參與 該過程的miRNAs可對干細胞分化的各個環(huán)節(jié)進行微調(diào)。 可促進移植干細胞分化為心肌細胞及促進血管新生,修復壞死心肌組織。 miRNA-1是高度保守的miRNAs家族,也是迄今為止研究為廣泛的miRNAs之一。miRNA-1是肌特異性miRNA. 在胚胎干細胞體外擬分化為胚體的過程中,miRNA-1可加強其中胚層基因的表達,使其向心肌方向分化。Fu等發(fā) 現(xiàn)過表達miRNA-1不僅能夠促進胚胎干細胞分化為心肌細 胞,還能促進分化而來的心肌細胞的電生理成熟。隨后也繼 之報道過骨髓間充質(zhì)干細胞轉(zhuǎn)染miRNA-1后,可通過抑制Notch信號通路的下游轉(zhuǎn)錄因子Hes-l而發(fā)揮促進骨髓間充 質(zhì)干細胞分化為心肌細胞的作用。Sluijter等研究認為 miRNA-1可通過下調(diào)組蛋白去乙?;?(HDAC4)表達而促進人心臟前體細胞向心肌細胞分化。此外,Richart等將胚胎源性心臟干細胞( SSEAI+/MESPI+)移植到小鼠心肌梗死 區(qū)域,可顯著促進新生血管形成,而在該類型心臟干細胞中 miRNA-21高表達,可以認為miRNA-21可促進心臟干細胞的血管新生作用。
2.4 miRNAs與干細胞旁分泌效應(yīng) 大量研究證實心肌受損后移植干細胞可通過直接分化作 用改善心功能,但是由于干細胞分化的心肌細胞數(shù)量有限,不足以替補心臟受損丟失的細胞數(shù)量,因此,不能單純用直接分化機制解釋干細胞再生修復受損心肌的作用。有學者認為干細胞不但可以直接再生心肌組織,而且還能通過旁分泌 效應(yīng)。增加細胞因子的表達,促進血管再生。并有報道稱干細胞的旁分泌效應(yīng)大于干細胞的直接分化作用。 對干細胞旁分泌作用的新研究發(fā)現(xiàn),多種干細胞可釋 放一種納米級膜性小囊泡,稱為外泌體,對細胞之間的相互作用至關(guān)重要。現(xiàn)已發(fā)現(xiàn)的外泌體中包含了相關(guān)miRNA。達764種。這些源于外泌體的miRNAs在調(diào)控干細胞分化(let-7,即miRNAs成員之一)、胚胎發(fā)育和器官發(fā)生(miRNA-1)、腫瘤 發(fā)生(miRNA-17-18/-19/19b)等生理和病理生理過程中發(fā)揮著關(guān)鍵作用。30,311。Chen等發(fā)現(xiàn),心肌祖細胞的外泌體中富含miRNA-451,將心肌細胞與含該外泌體的培養(yǎng)基中共培 養(yǎng)時發(fā)現(xiàn),心肌細胞內(nèi)的miRNA-451含量增加,且細胞對 缺氧的耐受增強,由此證明心肌細胞可以內(nèi)化心臟祖細胞釋 放的外泌體,并利用miRNA-451啟動細胞內(nèi)信號通路而減少缺血再灌注心肌細胞的凋亡,促進損傷細胞的修復。
3面臨的問題及展望
目前干細胞介導治療心肌梗死面臨著移植存活率低, 作用機制不確定性等問題,但干細胞的臨床應(yīng)用前景仍然擁 有非常巨大的研究價值。miRNAs作為轉(zhuǎn)錄調(diào)控的關(guān)鍵分子,對干細胞的生物學功能起著至關(guān)重要的調(diào)節(jié)作用。近年來大 量關(guān)于miRNAs改善于細胞療效的試驗研究取得可喜成果, 但仍存在許多問題。首先,盡管miRNAs的抑制靶基因表達的作用非常強,但若需要過表達或抑制相關(guān)miRNA。需要實施轉(zhuǎn)基因?qū)嶒?,即建立有效的小分子或病毒作為載體。雖然 近年來利用轉(zhuǎn)基因技術(shù)治療疾病已受到很大關(guān)注,歐洲國家 亦批準了個基因療法,并且以病毒作為載體治療心臟病的基因療法被證實是安全有效的。然而大規(guī)模的臨床應(yīng)用還需要經(jīng)過一個漫長的階段。其次,miRNA。的生物學功能 還遠遠未能被人類所了解,作為一種普遍存在的調(diào)控分子, 后續(xù)研究將會發(fā)現(xiàn)更多的miRNAs,進一步闡明其靶基因位點和功能,以便確定對整個基因網(wǎng)絡(luò)的全面影響是亟待解決的問題。后,目前對miRNAs靶基因的預測多是通過生物信息軟件來完成,因此仍需進行充分的生物學實驗來證實。 盡管應(yīng)用miRNAs調(diào)控干細胞生物學功能面臨諸多挑 戰(zhàn),但它對改善干細胞治療缺血性心肌病的作用是有目共睹的,相信隨著研究的進一步深入,上訴問題均會得以解決對miRNAs的了解也必將越來越全面和準確,這將為生命科 學研究和臨床應(yīng)用miRNAs介導干細胞治心肌梗死開啟新的 時代。
參考文獻
[1] van der Bogt KE, Sheikh AY, Schrepfer S. et al. Comparison of different adult stem cell types for treatment of myocardial ischemia. Circulation, 2008, 118: S121-S129.
[2] Janssens S, Dubois C, Bogaert J, et al. Autologous hone marrow- derived stem-cell transfer in patients with ST-segment elevation myocardial infarction: double-blind. randomized controlled trial. Lancet. 2006. 367: 113-121.
[3] Hare JM. Traverse JH, Henry TD, et al. A randomized, double-blind. placebo-controlled. dose-escalation study of intravenous adult human mesenchymal stem cells( prochymal )after acute myocardial infarction. J Am Coil Carrliol, 2009. 54: 2277-2286.
[4] Ellison CM, Vicinanza C, Smith AJ, et al. Adult c-kitpos cardiac stem cells are. necessary and sufficient for functional cardiac regeneration and Repair. Cell, 2013, 8: 827-842.
[5] Chugh AR, Beache GM, Loughran JH, et al. Administration of cardiac stem cells in patients with ischemic cardiomyopathy: the SCIPIO trial: surgical aspects and interim analysis of myocardial function and viability by magnetic resonanc.e. Circ.ulation. 2012. 126: S54-S64.
[6] Bolli R, Chugh AR, D' Amario D, et al. Cardiac stem c.ells in patients withischaemic cardiomyopathy (SCIPIO): initial results of a randomised phasetrial. Lancet, 2011, 378: 1847-1857.
[7] van Berlo JH, Kanisicak O, Maillet M. et al. c-kit+cells minimally contrib cardiomyocytes to the heart. Nature, 2014. 509: 337-345.
[8] Lee RC, Feinbaum RL. Amhros V, et al . The C. elegans heterochronic gene lin-4 e.ncodes small RNAs with antisense complementarity to lin-14. Cell. 1993. 75: 843-854.
[9] Huntzinger E, Izaurralde E. Cene silencing by mic.roRNAs: contributions of translational repression and mRNA decay. Nat Rev Genet, 2011, 12: 99-110.
[10] Bartel DP. MicroRNAs: genomics, biogenesis. mechanism. and function. Cell, 2004, 116: 281-297.
[11] Iorio MV. Croce CM. MicroRNA dysregulation in cancer: diagnostics, monitoring and therapeutics. A comprehensive review. EMBO Mol Med, 2012, 4: 143-159.
[12] Segers VF, Lee RT. Stem-cell therapy for cardiac disease. Nature. 2008, 451: 937-942.
[13] Chavakis E. Dimmeler S. Homing of progenitor cells to ischemic tissues. Antioxid Redox Sign, 2011, 15: 967-980.
[14] Heinrich EM. Dimmeler S. MicroRNAs and stem cells: control of pluripotency, reprogramming, and lineage commitment. Circ Res. 2012, 110: 1014-1022.
[15] Leonardo TR, Schultheisz HL. Loring JF, et al. The functions of microRNAs in pluripotency and reprogramming. Nat Cell Biol. 2012, 14: 1114-J121.
[16] Jakob P.Doerries C,Briand S,et al.Loss of angiomiR-126 and 130a in angiogenic early outgrowth cells from patients with chronic heart failure: role for impaired in vivo neovascularization and cardiac repair capacity. Circulation. 2012. 126: 2962-2975.
[17] 陸永光,李浪.微小核糖核酸與冠心病關(guān)系的研究進展.中國循環(huán)雜志,2010, 25: 484-486.
[18] Huang F,Zhu X,Hu XQ, et al.Mesenchymal stem cells ruodified with miR-126 release angiogenic factors and activate Notch ligand Delta- like-4, enhancing ischemic angiogenesis and cell survival. Int J、II.I Med, 2013. 31: 484-492.
[19] Nie Y, Han BM, Liu XB. et al. Identification of microRNAs involved in hypoxia- and serum deprivationlnduced apoptosis in mesenrh}'mal stem cells . Int J Biol Sci, 2011, 7: 762-768.
[20] Hu S. Huang M, Nguyen PK, et al. Novel microRNA prosurvival cocktail for improving engraftment and function of cardiac progenitor cell transplantation. Circulation, 2011, 124: S27-S34.
[21] Liu J, van Mil A, Vrijsen K, et al. MicroRNA-155 prevents necrotir cell death in human cardiomyocyte progenitor cells via targeting RIPI. J Cell Mol Me.d. 2011. 15: 1474-1482.
[22] Tano N, Kim HW. Ashraf M. et al. microRNA-150 regulates mobilization and migration of bone marrow-derived mononuclear cells by targeting Cxcr4. PLoS One, 2011. 6: 2311-2314.
[23J Labbaye C, Spinello J, Quaranta MT, et al. A thre.e-step pathw-av comprising PLZF/miR-146a/CXCR4controls megakaryopoiesis. Nat Cell Biol, 2008, 10: 788-801.
[24] Fu JD, Rushing SN, Lieu DK. et al. Distinct roles of microRNA-1 and -499 in ventricular specification and functional maturation of human embryonic stem cell-derived rardiomyocytes. PLoS One, 2011. 6:2741-2747.
[25] Huang F, Tang L, Fang ZF, et al. MiR-1 medited induction of eardiogenesis in mesenehymal stem cells via downregulation of hes-l. Biomed Res Int. 2013. 10: 216-286.
[261 Sluijter JP, van Mil A, van Vliet P, et al. MicroRNA-I and MicroRNA -499 regulate differentiation and proliferation in human_ derivecl eardiomyocyte pmgenitor cells. Arterioscler Thromb Vasc Biol, 2010, 30: 859-868.
[27] Rirhart A, Loyer X, Howangyin K, et al. MicroRNA-2lcoordinates human multipotent cardiovascular progenitors therapeutic potential. Stem Cells, 2014. 32: 2908-2922.
[28] Chimenti I, Smith RR, Li TS, et al. Relative roles of direct regeneration versus paracrine effects of human cardiosphere-derived cells transplanted into infarcted mic:e. Circ Res, 2010, 106: 971-980.
[29] Chimenti I, Smith RR, Leppo MK, et al. Human cardiac progenitor cells secrete paracrine. factors in vitro and in vivo. J Mol Cell Cardiol. 2008, 44: 802-803.
[30] Mathivanan S, Fahner CJ, Reid CE, et al. ExoCarta 2012: databa[x]se of exosomal proteins, RAN and lipids . Nucleic Acids Res. 2012, 40: 1241-1244.
[31] Waldenstrom A. Genneback N. Hellman U, et al. Cardiomyocyte microvesicles contain DNA/RNA and convey biological messages to target cells. PLoS One, 2012. 7: 1024-1032.
[32] Chen L, Wang Y, Pan Y. et al. Cardiac progenitor-derived exosomes protect ischemiac myocardium from acute ischemia/reperfusion injury. BBRC, 2013, 431: 566-571.
循環(huán)雜志 , 20J5. 30: 291-292.
[33] 李玲,石蓓.心臟干細胞移植治療缺血性心臟病的研究進展.中國循環(huán)雜志,20J5,30: 291 -292.
[34] Buning H. Gene therapy enters the pharma market: the short'story of a long journey. EMBO Mol Med, 2013. 5: 1-3.
[35] Shah SJ, Wasserstrom JA. SERCA2 a gene therapy for the prevention of sudden cardiac death: a future theranostic for heart failure? Circulation, 2012, 126: 2047-2050.
(收稿日期:2015-04-16) (編輯:王寶茹)